Curso Monitoreo de la Presión Intracraneana
ICP 2026

Módulo 1 · Introducción a la física y knobología de la imagen
Objetivo: comprender las bases físicas y técnicas del ultrasonido · Sesión conjunta pediatría y adultos

• Definiciones de POCUS.
• Bases físicas de la ecografía.
• Principios de adquisición de las imágenes.
• Optimización básica de las imágenes.
• Introducción a presets y configuración.

09:00 - 10:00 · Taller práctico

• Configuración de presets.
• Optimización en tiempo real.
• Reconocimiento de errores técnicos.
• Ajustes básicos de imagen.

Profesores titulares: Fausto Maldonado Coronel (Ecuador) · Javier Ponce (Argentina)

Módulo 2 · Neuroanatomía ultrasonográfica y ventanas cerebrales
Objetivo: interpretar por el sonido las estructuras cerebrales, las fuerzas y el flujo · Sesión conjunta pediatría y adultos

• Doppler transcraneal convencional (DTC).
• Doppler transcraneal color (DTCC).
• Ventanas acústicas.
• Anatomía vascular básica.
• Principales vasos intracraneales arteriales y venosos.
• Orientación anatómica.

12:00 - 13:00 · Taller práctico

• Búsqueda de ventanas.
• Planos de insonación.
• Reconocimiento anatómico dinámico.
• Identificación vascular básica.

Módulo 3 · Ecografía básica y hemodinamia sistémica
Sesión conjunta adultos y pediatras

13:00 - 14:30 · Escenarios y ventanas ecocardiográficas

• Mediciones básicas en POCUS.
• Respuesta y tolerancia a fluidos.
• Ecografía y shock.
• Evaluación hemodinámica inicial.

Taller práctico hemodinámico

• Adquisición de ventanas cardiacas.
• Evaluación hemodinámica básica.
• Resolución de casos clínicos integrados.

Módulo 4 · Patología neurovascular y neuromonitoreo
Acoplamiento corazón-cerebro · Sesión conjunta adultos y pediatras

• Acoplamiento ventrículo-cerebral.
• El cerebro como órgano meta.
• Integración corazón-cerebro en UCI.
• Respuesta a fluidos.
• Perfusión cerebral y hemodinamia sistémica.

Taller práctico

• Relación entre Doppler y función cardiaca.
• Integración hemodinámica.
• Casos de shock y neurocríticos.

Ecografía del nervio óptico (vaina de nervio óptico)
Sesiones separadas adultos y pediatría

• Ecografía ocular.
• Anatomía ecográfica ocular.
• Medición de la vaina del nervio óptico.
• Evaluación pupilar ecográfica.
• Limitaciones y errores frecuentes.

12:30 - 14:30 · Taller práctico

• Estandarización de la medición.
• Evaluación pupilar ecográfica.
• Casos clínicos básicos.

Módulo 5 · Vasoespasmo cerebral e hiperemia
Sesión conjunta pediatras y adultos

• Fisiopatología del vasoespasmo.
• Hiperemia cerebral.
• Particularidades en pediatría.
• Índice de Lindegaard.

Taller práctico

• Doppler carotídeo extracraneal.
• Cálculo del índice de Lindegaard.
• Casos clínicos.

Módulo 6 · Autorregulación vascular cerebral (AVC)
Sesiones por separado para adultos y niños

07:00 - 09:00

• Autorregulación cerebral.
• Reactividad vascular cerebral.
• Respuesta al CO2 y compresión carotídea.
• Evaluación funcional de la perfusión cerebral.

09:00 - 10:00 · Taller práctico

• Evaluación funcional de reactividad vascular.
• Interpretación clínica básica.

Módulo 7 · Circulación posterior, territorios venosos y compliance cerebral
Sesiones por separado adultos y niños

• Circulación posterior.
• Territorios venosos.
• Compliance cerebral.
• Circulación venosa intracraneal.
• Interpretación fisiológica.

Taller práctico

• Evaluación venosa cerebral.
• Exploración de circulación posterior.
• Identificación de estructuras venosas.

Módulo 8 · Casos clínicos complejos
Sesiones por separado adultos y niños

Taller analítico

• Resolución de casos clínicos.
• Correlación de casos con participación del cerebro, corazón y factores de lesión secundaria.
• Toma de decisiones guiadas por POCUS.
• Discusión multidisciplinaria de casos.
• Examen final y clausura del curso de ultrasonografía.

Taller práctico: modelo experimental animal (Varlix)

Objetivo: establecer los protocolos y técnicas para demostrar la afectación progresiva de la autorregulación vascular cerebral (AVC).

Metodología: los modelos animales usados en los talleres de años anteriores —encefalopatía hipertensiva, hidrocefalia aguda, estatus epiléptico, hematoma epidural, trombosis y trombolisis, entre otros— obligan a seleccionar una combinación de 2 modelos o más para demostrar la pérdida progresiva de la AVC. Se emplearán los monitores citados en el programa matutino: un grupo de alumnos insertará monitores de PIC y realizará mediciones con USG, desde la inserción hasta la recolección de los registros continuos.

Novedad de este año: por primera ocasión se podrán recolectar datos continuos de todas las variables mediante el sistema de la empresa Comen, lo que permitirá el análisis posterior y valorar la publicación de los modelos experimentales.

Protocolo general: bajo ayuno, sedación, parálisis y analgesia, en cuna térmica se canaliza un acceso venoso, se intuba endotraquealmente con videolaringoscopio y se conecta a ventilación mecánica y anestesia endovenosa (máquina de anestesia o sistema Anaconda con etrane). Se colocan catéteres de monitoreo hemodinámico intrapulmonar o sistema Flow-Tract de PICO, acceso arterial y transductores. Se insertan dos dispositivos de PIC —intraparenquimal e intraventricular— guiados por USG y se calibran los monitores. Se fijan electrodos de NIRS, BIS y EEG protegidos contra artefactos, y se toman muestras basales de gases arteriales, venosos centrales y yugulares.

Protocolo específico: según el modelo experimental elegido se efectúan los abordajes, craniectomías, conexiones arteriales externas periféricas con el sistema cerebral, disección y oclusión cerebral de arterias, y colocación de fármacos corticales o intraventriculares, con cálculo de variables hemodinámicas, recolección de datos y grabación de las sesiones. Se instala un catéter de oxígeno tisular en el área cercana al sitio de lesión.

Protocolo del modelo, paso a paso:

1. Hidrocefalia: inserción de un catéter intraventricular y colocación de 4 ml de sangre; los alumnos miden el tamaño de los ventrículos por USG.
2. Hematoma subdural: introducción de una sonda de alimentación subdural y sangre autóloga; los alumnos cuantifican el tamaño del hematoma por USG.
3. Crisis convulsivas: a través del catéter intraventricular se colocan 5 ml de penicilina; los alumnos miden la dilatación ventricular por USG.
4. Traslado intrahospitalario simulado: el cerdo, intubado y sedado, con ventilación, monitoreo de transporte y monitor de PIC con batería, es trasladado a planta baja para tomografía y valoración de la extensión del daño.
5. Pruebas de AVC: con los monitores de PIC disponibles (Camino, Pressio 2, Spiegelberg, Raumedic) y la señal de línea arterial integrada al monitor de signos vitales, se disecan ambas carótidas para compresión manual de 5 segundos y se incrementa progresivamente la presión arterial (1 microgramo/kg/min de norepinefrina). Se valoran el cambio en la morfología de la onda de pulso de la PIC y la relación PIC/PAM en el dominio del tiempo durante 10 segundos y por USG, junto con PIC, NIRS, BIS, ORx y TOx. Se toman valores basales y finales de gases arteriales entre cada paso.

Charlas relámpago (10 min c/u): cada profesor presenta las bases de su monitoreo, el abordaje efectuado, la técnica de anestesia y su participación.

• ¿Qué espero aprender de este modelo de AVC? — Dra. Diana Echeverría Casellas
• Índice Prx del monitor Raumedic: mi experiencia en México — Dr. José Juan García Vera
• Mi experiencia en los modelos de crisis convulsivas del Diplomado — Dra. Maricela Oliva Franco
• La anestesia en el cerdo de estos talleres, ¿qué he observado? — Dr. Francisco Arturo Gojón Mendoza
• ¿Por qué aprender de los abordajes en cerdos para una mejor capacitación? — Dr. Alberto de Montesinos Sanpedro
• ¿Cómo descargar y almacenar los archivos del monitor de signos vitales Comen? — Dr. Eduardo Romero Carmona

¿Qué va a ocurrir con el modelo experimental?

1. La severidad de los modelos se incrementa conforme pasa el tiempo: el volumen ventricular aumenta (un cerdo de 2 meses tiene ~30 ml de LCR entre ventrículos y médula espinal, de los que pueden extraerse 5 ml sin comprometer la dinámica cerebral). Se inyectan 4 ml de sangre autóloga y se cuantifica el cambio en la PIC (Índice = Volumen/Presión), calculando este índice y midiendo la autorregulación basal, mientras la sangre inyectada obstruye progresivamente la circulación del LCR.
2. En paralelo se inicia el modelo de hematoma subdural contralateral al ventrículo con sangre, con mediciones basales de los parámetros de monitoreo y adición progresiva de hasta 30 ml de sangre (equivalente al contenido de LCR), midiendo pruebas de autorregulación y modificaciones clínicas, de USG, monitoreo invasivo y EEG.
3. Se inicia el modelo de crisis convulsivas (las crisis suelen iniciar a los 15 minutos), observando modificaciones en el Setline y en los parámetros de autorregulación, con tratamiento farmacológico a cargo de los alumnos para yugularlas. Se calculan índices Prx basal y posteriores a cada maniobra; los registros continuos de las variables están a cargo de la empresa Comen.

Profesores: Alberto de Montesinos Sanpedro (Neurocirugía) · Fausto Maldonado Coronel (Neurosonología) · Maricela Oliva Franco, México (Neurofisiología) · Francisco Arturo Gojón Mendoza, México (Anestesiología) · Diana Echeverría Casellas (Terapia pediátrica) · Francisco Jiménez (Microcirugía) · Eduardo Romero Carmona, México (Ingeniería biomédica) · Cecilia Judith Taboada Palomino, Perú (Terapia pediátrica) · Jorge Isaac Rodríguez Gaspar, México (Terapia pediátrica) · Gabriel Alberto Moguel Cuesy, México (Terapia pediátrica)